電泳（Electrophoresis）是空間勻強電場作用下，分散粒子在流體中發生移動的現象。由于各物質的遷移速率有差別，故電泳是分離物質的常用方法。它又可分為移動界面電泳和區帶電泳。

       移動界面電泳是不含支持物的電泳。溶質在自由溶液中泳動，故也稱自由電泳，適用于高分子的檢測，但不易完全分離。

       區帶電泳是含有支持物的電泳，支持物上混合樣品被置于狹小的區帶中泳動，分離出彼此分離的區帶。支持物有很多種，由此又衍生出區帶電泳的不同分支，例如聚丙烯酰胺凝膠電泳、紙電泳、等電位聚焦電泳、等速電泳、薄層電泳等。

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       本文通過以下幾點闡述麥克林蛋白質電泳試劑的種類、反應原理及性質：

        1、示例實驗

        2、電泳原理

        3、膠體

        4、壓縮原理

        5、蛋白質電泳

        6、麥克林蛋白質電泳試劑產品介紹

示例實驗

       在盛有紅褐色Fe(OH)3膠體的U形管的兩個管口，各插入一個電極。從兩個電極通直流電后，觀察現象可見陰極附近的紅褐色逐漸變深，陽極附近的紅褐色逐漸變淺。這表明在有電場作用的情況下，膠體粒子帶正電荷，在電場作用下向陰極移動。這就是電泳現象。

電泳原理

       膠體能發生電泳現象，是因為膠體粒子帶有電荷，一般來說，是由于膠體粒子具有相對較大的表面積，能吸附離子的原因引起的。有的膠體粒子帶正電，有的帶負電，一般來說，金屬氫氧化物、金屬氧化物的膠體粒子帶正電；非金屬氧化物、金屬硫化物的膠體粒子帶負電荷。 利用不同物質分子表面所帶有的不均勻電荷而形成的偶極矩強度的不同，使得分子對于外加電荷和移動介質的吸引力各有所差異，導致在移動介質中的運動速度不同。利用此點，我們可以將不同大小片段的DNA分離。

膠體

       電泳實驗中使用聚丙烯酰胺作為膠體，其中膠體含有HCl做為緩沖溶液。膠體分為兩層，下方較寬的稱為分離膠體（resolving gel/separating gel/running gel），pH為8.8；上方較窄的稱為集膠膠體（stacking gel），pH為6.8。

       集膠膠體之所以會得到這個名字，是因為它會使樣本蛋白質在分離膠體上層被壓縮成一個扁盤，從而統一蛋白質進入分離膠體的時機。因為集膠膠體的聚丙烯酰胺濃度較低（～5%），所以不論大小分子都可以快速通過，而能聚集在分離膠體的前緣。當進入分離膠體后，因為聚丙烯酰胺濃度提高很多（12%，14%，甚至更高），使分子前進的速度受其大小所影響，而開始分離。

壓縮原理

       注入電泳槽的樣本會由負電離子帶著游過膠體，通常使用pH8.3的甘氨酸和HCl制成的膠體作為攜帶媒介。pH8.3時僅10%的甘氨酸帶負電，因此蛋白質樣本由Cl-帶著進入集膠膠體。與蛋白質連接的Cl-帶頭朝下，疊在集膠膠體底部，被SDS包圍的蛋白質殿后，最上面的是帶正電的甘氨酸；這樣的組合會使蛋白質被像三明治般夾起來，壓縮成較小體積。

蛋白質電泳

       蛋白質電泳（Protein electrophoresis）是根據蛋白質帶電量或分子量的大小把不同的蛋白質分開，起到分離純化的效果。根據帶電量分離的叫“等電點電泳”（二維電泳），根據分子量分的是用“十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳”。后者的運用較廣泛，與轉膜技術，抗原抗體反應，和成像技術合起來就是分子生物學實驗室常用的“蛋白質印跡法”（western blotting）。

考馬斯克染色法

麥克林蛋白質電泳產品介紹

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